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品牌：Elabscience
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Elabscience_流式实验常见问题及解决方案
152 人阅读发布时间：2022-10-27 11:48
1.无染色/弱染色
2.高背景/非特异性染色
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| 可能的原因 | 解决方法 |
| 抗体贮存和操作不当 | 抗体应保存在2-8℃中，避光保存，同时避免反复冻融 |
| 荧光染料淬灭 | 荧光抗体和荧光抗体染色后的样本都应该避光保存 |
| 自发荧光较高 | 改变抗体的荧光染料形式，避开与自发荧光相同发射光的染料 |
| 染色时间和温度不正确 | 适当调整染色时间和温度 |
| 使用错误的染色液染色细胞内蛋白 | 为了获得最佳细胞内蛋白染色，应该使用正确的缓冲液系统进行细胞固定并破膜，以检测胞浆和细胞核蛋白 |
| 分泌性胞内蛋白 | 流式细胞检测时，细胞因子、趋化因子和生长因子等分泌性蛋白必须保留在细胞内 |
| 蛋白质下调，内化或从细胞中被剪切 | 确定使用的刺激条件不会影响蛋白质定位 |
| 蛋白的表达水平过低 | 对于表达水平过低的抗原，染色时使用最亮的荧光染料，两步法染色有时可以提高敏感性，例如先使用生物素化抗体，再使用荧光结合二级抗体染色 |
| 细胞的分离方案或冷冻贮藏破坏抗原 | 从固态组织或细胞培养皿中收集细胞使用的酶会破坏细胞表面蛋白质，尝试用非酶的试剂制备细胞。检测制备细胞的试剂和细胞的贮藏/处理，是否可能影响抗原 |
| 激光器性能异常 | 使用流式细胞仪设定&跟踪（CS&T）微球，以检查激光的校准和功能 |
| 使用的滤片不正确 | 检查所用荧光染料的激发波长与发射波长，确保使用正确的激光和滤片收集数据 |
| 数据过度补偿 | 利用单染色对照和荧光减一（FMO）对照为每次实验设定补偿 |
| 细胞群的设门不正确 | 确保对细胞群的正确设门，使用活性染料并对单细胞群设门，可大幅度减少假阳性 |
| 数据分析不正确 | 为最佳显示稀有细胞或染色暗淡的细胞，利用双参数图观察细胞 |
2.高背景/非特异性染色
| 可能的原因 | 解决方法 |
| 自体荧光较高 | 使用相同刺激条件，但不用任何试剂染色的样本作为细胞自体荧光的对照 |
| 抗体与死细胞结合 | 染色中包含使用活性染料染色，来排除死细胞 |
| Cy5染料 | Cy5和其它基于青蓝色素的染料，会与特定细胞的Fc受体非特异性结合，例如单核细胞和巨噬细胞，考虑使用其它荧光染料 |
| 抗体浓度过高 | 滴定抗体的用量 |
| 二级抗体/试剂非特异性结合 | 滴定二级抗体，使本底降至最低程度，阻断Fc受体，确保使用已经被高度认可无非特异性的二级抗体 |
| 染色时间太长 | 根据实验细胞表达，优化抗体浓度和孵育时间 |
| 洗涤不充分 | 增加染色后的洗涤次数 |
| 补偿调节不足 | 利用单染色对照和荧光减一（FMO）对照为每次实验设定补偿 |
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