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679 人阅读发布时间:2022-06-22 14:42
CD127 VS Foxp3
虽然Foxp3是目前公认的调节性T细胞最特异的指标,但因其位于细胞内,使得Foxp3的染色必须要固定细胞并破核膜,因此这种方法并不适用于分离活的Tregs,且该方法比较传统,操作相对复杂,稍有不慎就会影响实验结果。
而CD127属于细胞表面Marker,无需固定破膜。因此,当前主流方向是通过CD127来检测人Tregs。
CD127的发现
CD127是2006年被发现的一种检测CD4+CD25+调节性T细胞的新指标。由于不需要将细胞固定破膜处理,检测起来要比Foxp3方便。
研究发现,CD4+CD25+纯化的细胞中,CD127与Foxp3的表达呈负相关。通过CD4+CD127low纯化出的CD4+CD25+ T细胞,与Foxp3纯化的CD4+CD25+ T细胞数量相似,并且这部分细胞展现了CD4+CD25+调节性T细胞的典型特征。CD4+CD25+CD127-/low是较CD4+CD25+Foxp3+更优的特异性检测
配色方案
| 细胞亚群 | 种属 | 指标 | 荧光标记 | 克隆号 |
| Treg | Human | CD45 | EV450 | HI30 |
| CD3 | ER780 | OKT3 | ||
| CD4 | FITC | RPA-T4 | ||
| CD8a | PerCP/Cyanine5.5 | OKT-8 | ||
| CD25 | PE | BC96 | ||
| CD127 | AF647 | A019D5 |
人Treg鉴定所需流式抗体
| 产品名称 | 荧光素 | 货号 | 规格 |
| CD45 | EV450 | E-AB-F1137Q | 20T |
| CD3 | ER780 | E-AB-F1001S | 20T |
| CD4 | FITC | E-AB-F1109C | 20T |
| CD8a | PerCP/Cyanine5.5 | E-AB-F1110J | 20T |
| CD25 | PE | E-AB-F1194D | 20T |
| CD127 | AF647 | E-AB-F1152M | 20T |
人Treg鉴定所需辅助试剂
| 作用 | 货号 | 名称 | 规格 |
| 细胞染色 缓冲液 |
E-CK-A107 | Cell Staining Buffer | 100mL |
| 红细胞 裂解液 |
E-CK-A105 | 10×ACK Lysis Buffer | 100mL |
样本管设置
| 目的 | 样本 | 设置 |
| 调电压 | 1 | Blank(空白管) |
| 调补偿 | 2 | CD45-EV450 |
| 3 | CD3-ER780 | |
| 4 | CD4-FITC | |
| 5 | CD8a-PerCP/Cyanine5.5 | |
| 6 | CD25-PE | |
| 7 | CD127-AF647 | |
| Full Panel | 8 | CD45-EV450、CD3-ER780、CD4-FITC、CD8a-PerCP/Cyanine5.5、CD25-PE、CD127-AF647 |
实验步骤
01
在离心管内加入100μL新鲜血,与2mL 1×ACK红细胞裂解液混匀,4℃裂解10min;
02
300g离心5min(裂解完立即离心,防止时间过长损伤细胞),弃掉上清,用移液枪轻轻吸走残液,可以得到白色的细胞沉淀;
03
加入100μL细胞染色缓冲液,重悬细胞,与流式抗体混匀,4℃孵育30min;
04
加入2mL细胞染色缓冲液,300g离心5min,弃掉上清,再加入200μL细胞染色缓冲液,重悬细胞;
05
上机进行检测。
实验结果
人外周血Treg细胞表型分析
解析:
▶ 荧光素间有溢漏,故需要设置单阳管,用于调节补偿;
▶ 本实验取正常人外周血验证,无生物学对照;
▶ 增加CD45指标,便于淋巴细胞圈门;
▶ 圈门路径:
第一步,根据CD45和SSC-H,圈出淋巴细胞群;
第二步,利用FSC-H和SSC-H,去黏连,得到单细胞;
第三步,通过CD3,确定CD3+ T细胞;
第四步,通过CD4和CD8,得到CD4+辅助T细胞;
第五步,通过CD25+CD127-/low,确定出Treg细胞亚群。