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866 人阅读发布时间:2022-11-29 16:11
不久前,我们发布了文章:从入门到精通:Annexin V凋亡实验超详细攻略(点击查看),给大家讲解了Annexin V实验中需要注意的一些小细节,好多同学跟咱们反馈说,这些细节问题我在实验的时候都注意了,但实验结果还是很不理想。
出现异常实验结果时,我们该怎么办呢?
直接丢掉这次数据重新实验吗?
No!No!No!
我们需要认真对待失败的实验数据,分析总结实验失败的可能原因,这样才能有针对性地重新实验,得到理想的实验结果。
本篇文章,我们将结合多年实验经验,为大家带来Annexin V的常见问题分析,通过实际案例,让大家更深入地了解Annexin V实验。
问题一:处理组晚期凋亡细胞分两群,缺少早期凋亡

可能原因:细胞处理条件太过剧烈,如:药物浓度过大、溶解药物的有机溶剂用量过大、极端条件(沸水等)处理细胞,导致细胞迅速死亡,呈现类似周期实验中细胞被固定的效果,缺少凋亡过程。
解决方案:温和处理细胞,如:降低药物浓度;有机溶剂(DMSO等)的量最好控制在5‰以下。
问题二: 缺少早期凋亡细胞,并且伴随大量坏死或裸核细胞

可能原因:药物处理时间过长,不耐药细胞凋亡后转向裸核,耐药细胞不再发生凋亡。
解决方案: 缩短药物处理时间(为保证凋亡效果,可以适当增加药物处理的剂量)。
问题三 : 核染(PI/7-AAD/DAPI),无阳性信号
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可能原因 |
解决方案 | |
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①核染料忘记添加 |
①重新实验,注意添加核染料 | |
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②试剂保存不当而失效,如7-AAD没在-20℃下保存 |
②重新购买试剂,注意试剂的保存条件 | |
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③细胞确实没有凋亡 |
③重新调整细胞处理条件,可以借助显微镜观察细胞是否凋亡 | |
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④阈值设置过大,凋亡信号没有收集到 |
④调整仪器设置,降低阈值 | |
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⑤贴壁细胞培养液上清中的细胞没有收集 |
⑤重新实验,注意收集上清中的细胞 | |
问题四: 分群不明显
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可能原因 |
解决方案 | |
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①细胞带自发荧光 |
①更换其他标记的试剂盒 | |
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②细胞凋亡过多导致染料不足 |
②增加染料用量 | |
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③细胞状态较差,所有细胞都有一定的PS外翻 |
③培养、实验过程都需要温柔对待细胞 | |
问题五:空白组有荧光信号
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可能原因 |
解决方案 | |
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①流式细胞仪没有清洗干净 |
①彻底清洗仪器 | |
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②荧光物质(如:阿霉素、四环素、细胞转染了带荧光的质粒等)干扰 |
②更换其他荧光标记的试剂盒,或者用其他物质培养细胞 | |
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③凋亡或者坏死的本底荧光 |
③空白组应选用状态良好的正常细胞,如细胞状态过差无法恢复或存在污染,应及时更换细胞 | |
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④细胞不纯 | ||
问题六 正常细胞出现大量凋亡
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可能原因 |
解决方案 | |
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①细胞状态不佳 |
①调整细胞状态,重新培养细胞 | |
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②实验操作时手法粗暴,或细胞消化过度 |
②温柔对待细胞 | |
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③孵育时间过长,长时间处于非正常生长环境会导致细胞凋亡 |
③控制好实验的时间,如果样本太多,可以分批进行实验 | |
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④Binding Buffer稀释的问题:buffer未正确稀释,溶液渗透压异常导致细胞凋亡 |
④按照说明书要求进行操作 | |
当然,好的结果都是都是一样的好,不好的结果各有各的不好,咱们目前列举了一些常见的异常情况,希望对大家的实验有帮助~
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