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搞定活性氧(ROS)实验!荧光探针从选对到用对

5 人阅读发布时间:2026-09-17 09:03

ROS检测的你,是不是也经历过这些:染色染不出来、荧光弱得像没加探针、给药组居然比模型组还亮、同一个protocol换批细胞就完全失效等,别急,这些坑我们几乎都踩过一遍。

活性氧(ROS)检测氧化应激研究中的常用实验,荧光探针法因操作相对简便、灵敏度较高而被广泛采用。但在实际工作中,不少研究者会遇到荧光信号弱、组间趋势反常、结果重复性差等问题。本文梳理了我们实验室在长期实践中积累的经验和教训,希望能为大家提供一份可直接参考的操作指引。

一、选对探针:找准目标ROS

不同探针检测的对象和定位各不相同,选错探针可能导致结论不准确。下面是几种常用探针的适用场景:

探针

检测对象

主要特性

DCFH-DA

总ROS(整体氧化水平)

经典探针,无荧光,进入细胞后经酯酶水解为DCFH,被ROS氧化为绿色荧光DCF;价格低廉,但无特异性

‌CM-DCFH-DA

总ROS(信号增强型)

分子结构与DCFH-DA相似,但细胞内滞留效率更高,荧光信号强度通常优于DCFH-DA

MitoSOX Red

线粒体超氧阴离子(O2-·)

靶向线粒体,被超氧化物氧化后产生红色荧光,线粒体功能障碍及氧化应激研究的优选

DHE(二氢乙锭)

胞内超氧阴离子

反应后呈现红色荧光,主要用于检测胞内的超氧化物水平

建议:根据实验要回答的科学问题来选择探针,而非盲目使用某种最常用或最廉价的试剂。

二、加样顺序:匹配刺激时长

探针与刺激药物的加入顺序取决于刺激时长,需根据细胞模型预先设定:

  • 短时刺激(≤2 h)

    先装载探针,后加刺激。这样能让探针预先进入细胞,捕捉到早期快速产生的ROS峰。

  • 长时刺激(≥6 h)

    先加刺激,在检测前30-60 min再装载探针。长时间孵育可能导致探针衰减或泄漏。

  • 中间时长(约4 h)

    按长时刺激处理,先刺激后装载。

例如:阳性对照(如ROSup)一般37℃避光孵育20–30分钟即可,但细胞差异很大:HeLa通常30分钟起效,而MRC-5人胚肺成纤维细胞可能需要约1.5小时。常用细胞系可以把阳性对照和探针同时加入共孵育,节省时间。

三、信号排查:定位荧光偏弱诱因

如果染色后信号明显低于预期,可以从下面几个维度逐项排查:

  • 探针工作液是否现配现用?

    储备液要分装避光保存在-20℃,避免反复冻融,每次取一管,不浪费也不失效。

  • 血清是否去除干净?

    血清中的酯酶会分解探针,装载前务必用预热的无血清培养基清洗细胞。

  • 培养基是否含酚红

    酚红会产生背景干扰,换成无酚红HBSS或无酚红DMEM会有明显改善。

图1展示了DCFH-DA检测中未用无血清培养基清洗细胞时,FITC通道下的背景荧光情况。可见未清洗组背景信号明显偏高,提示血清残留及酚红对检测结果的干扰不可忽视。

图片

图1. DCFH-DA染色后未清洗组已清洗组细胞FITC通道荧光对比

  • 孵育时间是否足够?

    以MitoSOX为例,说明书建议10 min,但很多细胞系可能需要延长到15-20 min,一般不超过30 min,否则探针堆积反而抬高背景。

  • 全程避光了吗?

    从稀释工作液开始就要注意避光操作。

建议大家先用试剂盒自带的阳性对照做预实验,确定染色时间和检测条件,熟悉实验操作的流程与步骤,再正式上样,避免盲目实验可能造成的样本及时间浪费。

四、浓度设置:避免照搬说明书条件

说明书的浓度只是一个起点,不同细胞类型、密度、状态对最佳浓度的要求差异很大。实操思路:

  • 以说明书浓度为中心;

  • 上下各设置2-3个梯度(例如DCFH-DA尝试5、10、20 μM);

  • 选出信噪比最高的浓度。

注意:浓度太高会导致探针堆积、背景升高,还可能对细胞产生毒性。

五、假阳性规避:排查药物干扰

如果给药组的荧光强度比模型组还高,结果看起来反常,不必马上否定实验。可能的原因包括

  • 药物本身具有荧光或氧化还原活性(如含酚羟基、醌类结构的化合物可能直接氧化探针);

  • 药物引发了细胞应激性ROS爆发;

  • 细胞密度或状态在组间不一致。

必须设置“药物+探针+无细胞”的空白对照,以排除药物对探针的直接作用。此外,部分探针在光照下可能发生光敏反应,需要同步设置避光对照。

六、上机规范:保障数据稳定性

  • 流式检测:注意统一细胞数量、装载时间和上机时间(DCF荧光会随时间衰减),固定电压和补偿参数。

  • 荧光拍照:确保各组曝光参数一致,染色后尽快拍摄。共聚焦显微镜的信噪比优于宽场荧光显微镜,条件允许时优先选用。

ROS检测的重复性,很大程度上取决于三个方面:

(1)探针选择是否合理;

(2)操作顺序是否正确;

(3)干扰因素是否排除到位。

把阳性对照、阴性对照、药物空白对照这三组都做全,同时严格避光、使用无血清体系、现配现用,数据稳定性会有质的提升。

希望这份指南能帮大家少走一些我们走过的弯路。如果你也有自己的心得,或者遇到过什么奇葩翻车现场,欢迎留言与我们交流探讨~

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